Метильные зонды в белках для определения режима связывания лиганда в слабом белке
ДомДом > Новости > Метильные зонды в белках для определения режима связывания лиганда в слабом белке

Метильные зонды в белках для определения режима связывания лиганда в слабом белке

Aug 14, 2023

Научные отчеты, том 12, Номер статьи: 11231 (2022) Цитировать эту статью

1067 доступов

1 Цитаты

13 Альтметрика

Подробности о метриках

Структуры комплексов белок-лиганд предоставляют важную информацию для разработки лекарств. Структуры большинства комплексов белок-лиганд определяются с помощью рентгеновской кристаллографии, но там, где кристаллография не может создать структуру комплекса, ЯМР часто является лучшей альтернативой. Однако доступные инструменты, позволяющие быстро и надежно определять структуру комплексов белок-лиганд с помощью ЯМР, в настоящее время ограничены. Это приводит к ситуациям, когда проекты либо прекращаются, либо продолжаются без структурных данных, что усложняет задачу. Ранее мы сообщали о подходе ЯМР-молекулярной замены (ЯМР2), который позволяет определять структуру комплекса белок-лиганд, не требуя выполнения громоздкой задачи определения резонанса белка. Здесь мы описываем подход ЯМР2 для определения положения связывания небольшой молекулы в слабом комплексе белок-лиганд путем сбора разреженных белковых NOE от метила к лиганду из селективно меченного образца белка и немеченого лиганда. В схеме селективного мечения все метилсодержащие остатки белка протонируются на дейтерированном фоне. Это позволяет измерять межмолекулярные NOE с большей чувствительностью, используя стандартные последовательности импульсов NOESY вместо экспериментов ЯМР с изотопной фильтрацией. Этот подход к мечению хорошо подходит для подхода ЯМР2 и расширяет его возможности, включая более крупные комплексы белок-лиганд.

Разработка лекарств на основе структуры оказалась очень эффективной в процессе оптимизации1. Рентгеновская кристаллография является предпочтительным методом получения структурных данных2. Хотя кристаллизация обычно хорошо работает с лигандами с высоким сродством, те, которые слабо связываются, могут оказаться более сложными. Когда комплекс не кристаллизуется, ЯМР может предоставить альтернативный подход для получения структурных данных. Однако время, необходимое для создания структуры с помощью ЯМР, часто оказывается слишком долгим для проектов в области медицинской химии. В последние годы были разработаны многочисленные методы ЯМР, которые позволяют определить способ связывания лиганда3. Возмущение химического сдвига (CSP)4,5,6,7, перенос насыщения8, частичное отнесение резонанса ЯМР9 и подходы псевдоконтактного сдвига10,11 — вот несколько методов решения этой проблемы12,13,14. Ранее мы сообщали о методе определения структуры сайта связывания белок-лиганд, называемом молекулярной заменой ЯМР, NMR2. Этот метод может генерировать точные структуры сайта связывания белок-лиганд в течение нескольких дней15,16,17. Для NMR2 не требуются назначения ни основной, ни боковой цепи. Вместо этого этот метод использует полудвусмысленные межмолекулярные NOE белок-лиганд и внутрилигандные NOE в качестве экспериментальных входных данных в сочетании со стартовой моделью белка для расчета связанной структуры. Расчеты структуры основаны на стандартных протоколах ЯМР, а результаты ранжируются в соответствии с согласием между экспериментальными входными данными и расчетной структурой. ЯМР2 является систематическим методом и, следовательно, не содержит стохастической составляющей. Он также опирается не на рецепты стыковки, а на серию надежных протоколов расчета конструкции. ЯМР2 можно использовать для решения нескольких различных типов сложных структур, включающих сильные и слабые связующие, небольшие молекулы, пептиды и пептидомиметики15,16,17. Этот метод также способен обнаруживать загадочные карманы связывания15,16,17. Здесь мы подробно рассказываем об использовании ЯМР2 в сочетании со специфическими схемами метильной маркировки на дейтерированном фоне (см. дополнительный рисунок S1). Преимущество специфических схем мечения метила в ЯМР белков, где метильные группы протонируются на дейтерированном фоне, позволяет изучать системы с гораздо более высокой молекулярной массой из-за благоприятных релаксационных свойств метильных групп18,19. Кроме того, возможно стереоспецифическое мечение метильных групп, что снижает неоднозначность резонансных назначений белков.

 0.02 ppm and had a calculated solvent accessibility above 15% were selected for use as ambiguous intermolecular distances in HADDOCK. NMR2 input NOE lists with protein assignments were used for HADDOCK. The intermolecular NOE distance constraints were tabulated in CNS format with the lower distance limit (target distance in Å – 1.8 Å) and the upper distance limit (target distance in Å + 15% of target distance in Å) as described23. 10,000 models were generated in it0 (rigid body docking stage) and 400 models were calculated in it1 (semi-flexible simulated annealing) followed by water refinement. Of the final 400 water refined HADDOCK models, the 10 lowest energy structures with minimal distance restraint violations (< 0.5 Å) were selected for the analysis. The electrostatic flag was switched on during the HADDOCK calculation. The segment "Q164-D172" was defined as fully flexible throughout HADDOCK docking as reported previously23./p>